• Расчет цветового показателя крови


    4.Расчет цветного показателя.

    Цветовой показатель – это соотношение между количеством гемоглобина крови и числом эритроцитов носит название. Цветовой показатель позволяет определить степень насыщения эритроцитов гемоглобином.

    В 1 мкл крови в норме содержится 166*10-6 г гемоглобина и 5,00*106 эритроцитов, следовательно содержание гемоглобина в 1 эритроците в норме равно:

    166 · 10-6

    = 33 · 10 -12 пг (пикограмм).

    5,00 · 106

    Величину в 33 пг, составляющую норму содержания гемоглобина в 1 эритроците, принимают за 1 (единицу) и обозначают как Цветовой показатель.

    Практически вычисление Цветового показателя (ЦП) производят путем деления количества гемоглобина (Hb) в 1 мкл (в г/л), на число, состоящее из первых 3-х цифр количества эритроцитов с последующим умножением полученного результата на коэффициент 3.

    ЦП=

    Hb (гемоглобин), г/л

    · 3

    число эритроцитов (первые 3 цифры)

    Например, Hb=167 г/л, Количество эритроцитов - 4,8·1012 (или 4,80·1012). Первые три цифры количества эритроцитов - 480.

    ЦП=167 / 480 · 3 = 1,04

    В норме цветовой показатель находится в пределах 0,86—1,05 (Меньшиков В. В., 1987); 0,82—1,05 (Воробьев А. И., 1985); 0,86—1,1 (Козловская Л. В., 1975).

    В практической работе удобно пользоваться для подсчета цветового по­казателя пересчетными таблицами и номограм­мами. По величине цветового показателя приня­то делить анемии на гипохромные (ниже 0,8); нормохромные (0,8—1,1) и гиперхромные (вы­ше 1,1).

    Клиническое значение. Гипохромные ане­мии — это чаще железодефицитные анемии, обусловленные длительными хроническими кровопотерями. В данном случае гипохромия эрит­роцитов обусловлена дефицитом железа. Гипо­хромия эритроцитов имеет место при анемии беременных, инфекциях, опухолях. При талассемии и отравлениях свинцом гипохромные анемии обусловлены не дефицитом железа, а нарушени­ем синтеза гемоглобина.

    Наиболее частой причиной гиперхромной анемии является дефицит витамина В12, фолиевой кислоты.

    Нормохромные анемии наблюдаются чаще при гемолитических анемиях, острой кровопотере, апластической анемии.

    Однако цветовой показатель зависит не толь­ко от насыщения эритроцитов гемоглобином, но и от величины эритроцитов. Поэтому морфоло­гические понятия о гипо-, нормо- и гиперхромной окраске эритроцитов не всегда совпадают с дан­ными цветового показателя. Макроцитарная анемия с нормо- и гипохромными эритроцитами может иметь цветовой показатель выше едини­цы, и наоборот, нормохромная микроцитарная анемия дает всегда цветовой показатель ниже.

    Поэтому при различных анемиях важно знать, с одной стороны, как изменилось общее содержание гемоглобина в эритроцитах, и с другой,— их объем и насыщенность гемоглобином.

    БИЛЕТ№40

    1 Передача возбуждения на вегетативный ганглий. Медиаторы постсинапитического.

    У позвоночных животных в автономной нервной системе имеется три вида синаптической передачи: электрическая, химическая и смешанная. Органом с типичными электрическими синапсами является цилиарный ганглий птиц, лежащий в глубине глазницы у основания глазного яблока. Передача возбуждения здесь осуществляется практически без задержки в обоих направлениях. К редко встречающимся можно отнести и передачу через смешанные синапсы, в которых одновременно соседствуют структуры электрических и химических синапсов. Этот вид также характерен для цилиарного ганглия птиц. Основным же способом передачи возбуждения в автономной нервной системе является химический. Он осуществляется по определенным закономерностям, среди которых выделяют два принципа. Первый (принцип Дейла) заключается в том, что нейрон со всеми отростками выделяет один медиатор. Как стало теперь известно, наряду с основным в этом нейроне могут присутствовать также другие передатчики и участвующие в их синтезе вещества. Согласно второму принципу, действие каждого медиатора на нейрон или эффектор зависит от природы рецептора постсинаптической мембраны.

    В автономной нервной системе насчитывают более десяти видов нервных клеток, которые продуцируют в качестве основных разные медиаторы: ацетилхолин, норадреналин, серотонин и другие биогенные амины, аминокислоты, АТФ. В зависимости от того, какой основной медиатор выделяется окончаниями аксонов автономных нейронов, эти клетки принято называть холинергическими, адренергическими, серотоиинергическими, пуринергическими и т. д. нейронами.

    Каждый из медиаторов выполняет передаточную функцию, как правило, в определенных звеньях дуги автономного рефлекса. Так, ацетилхолин выделяется в окончаниях всех преганглионарных симпатических и парасимпатических нейронов, а также большинства постганглионарных парасимпатических окончаний. Кроме того, часть постганглионарных симпатических волокон, иннервирующих потовые железы и, по-видимому, вазодилататоры скелетных мышц, также осуществляют передачу с помощью ацетилхолина. В свою очередь норадреналин является медиатором в постганглионарных симпатических окончаниях (за исключением нервов потовых желез и симпатических вазодилататоров) — сосудов сердца, печени, селезенки.

    Медиатор, освобождающийся в пресинаптических терминалах под влиянием приходящих нервных импульсов, взаимодействует со специфическим белком-рецептором постсинаптической мембраны и образует с ним комплексное соединение. Белок, с которым взаимодействует ацетилхолин, носит название холинорецептора, адреналин или норадреналин — адренорецептора и т. д. Местом локализации рецепторов различных медиаторов является не только постсинаптическая мембрана. Обнаружено существование и специальных пресинаптических рецепторов, которые участвуют в механизме обратной связи регуляции медиаторного процесса в синапсе.

    Помимо холино-, адрено-, пуринорецепторов, в периферической части автономной нервной системы имеются рецепторы пептидов, дофамина, простагландинов. Все виды рецепторов, вначале обнаруженные в периферической части автономной нервной системы, были найдены затем в пре- и постсинаптических мембранах ядерных структур ЦНС.

    Характерной реакцией автономной нервной системы является резкое повышение ее чувствительности к медиаторам после денервации органов. Например, после ваготомии орган обладает повышенной чувствительностью к ацетилхолину, соответственно после симпатэктомии — к норадреналину. Полагают, что в основе этого явления лежит резкое возрастание числа соответствующих рецепторов постсинаптической мембраны, а также снижение содержания или активности ферментов, расщепляющих медиатор (ацетилхолин-эстераза, моноаминоксидаза и др.).

    В автономной нервной системе, помимо обычных эффекторных нейронов, существуют еще специальные клетки, соответствующиепостганглионарным структурам и выполняющие их функцию. Передача возбуждения к ним осуществляется обычным химическим путем, а отвечают они эндокринным способом. Эти клетки получили название трансдукторов. Их аксоны не формируют синаптических контактов с эффекторными органами, а свободно заканчиваются вокруг сосудов, с которыми образуют так называемые гемальные органы. К трансдукторам относят следующие клетки: 1) хромаффинные клетки мозгового слоя надпочечников, которые на холинергический передатчик преганглионарного симпатического окончания отвечают выделением адреналина и норадреналина; 2) юкста-гломерулярные клетки почки, которые отвечают на адренергический передатчик постганглионарного симпатического волокна выделением в кровяное русло ренина; 3) нейроны гипоталамических супраоптического и паравентрикулярного ядер, реагирующие на синаптический приток разной природы выделением вазопрессина и окситоцина; 4) нейроны ядер гипоталамуса.

    Действие основных классических меадиаторов может быть воспроизведено с помощью фармакологических препаратов. Например, никотин вызывает эффект, подобный эффекту ацетилхолина, при действии на постсинаптическую мембрану постганглионарного ней­рона, в то время как сложные эфиры холина и токсин мухомора мускарин — на постсинаптическую мембрану эффекторной клетки висцерального органа. Следовательно, никотин вмешивается в меж­нейронную передачу в автономном ганглии, мускарин — в нейро-эффекторную передачу в исполнительном органе. На этом основании считают, что имеется соответственно два типа холинорецепторов: никотиновые (Н-холинорецепторы) и мускариновые (М-холинорецепторы). В зависимости от чувствительности к различным катехоламинам адренорецепторы делят на α-адренорецепторы и β-адренорецепторы. Их существование установлено посредством фармакологических препаратов, избирательно действующих на определенный вид адренорецепторов.

    В ряде висцеральных органов, реагирующих на катехоламины, находятся оба вида адренорецепторов, но результаты их возбуждения бывают, как правило, противоположными. Например, в кровеносных сосудах скелетных мышц имеются α- и β-адреноре­цепторы. Возбуждение α-адренорецепторов приводит к сужению, а β-адренорецепторов — к расширению артериол. Оба вида адрено­рецепторов обнаружены и в стенке кишки, однако реакция органа при возбуждении каждого из видов будет однозначно характеризоваться торможением активности гладких мышечных клеток. В сердце и бронхах нет α-адренорецепторов и медиатор взаимодействует толь­ко с β-адренорецепторами, что сопровождается усилением сердечных сокращений и расширением бронхов. В связи с тем что норадреналин вызывает наибольшее возбуждение β-адренорецепторов сердечной мышцы и слабую реакцию бронхов, трахеи, сосудов, первые стали называть β1-адренорецепторами, вторые — β2-адренорецепторами.

    При действии на мембрану гладкой мышечной клетки адреналин и норадреналин активируют находящуюся в клеточной мембране аденилатциклазу. При наличии ионов Mg2+ этот фермент катализирует образование в клетке цАМФ (циклического 3' ,5' -аденозинмонофосфата) из АТФ. Последний продукт в свою очередь вызывает ряд физиологических эффектов, активируя энергетический обмен, стимулируя сердечную деятельность.

    Особенностью адренергического нейрона является то, что он обладает чрезвычайно длинными тонкими аксонами, которые разветвляются в органах и образуют густые сплетения. Общая длина таких аксонных терминалей может достигать 30 см. По ходу терминалей имеются многочисленные расширения — варикозы, в которых синтезируется, запасается и выделяется медиатор. С приходом импульса норадреналин одновременно выделяется из многочисленных расширений, действуя сразу на большую площадь гладкомышечной ткани. Таким образом, деполяризация мышечных клеток сопровождается одновременным сокращением всего органа.

    Различные лекарственные средства, оказывающие на эффекторный орган действие, аналогичное действию постганглионарного во­локна (симпатического, парасимпатического и т.п.), получили название миметиков (адрено-, холиномиметики). Наряду с этим имеются и вещества, избирательно блокирующие функцию рецепторов постсинаптической мембраны. Они названы ганглиоблокаторами. Например, аммониевые соединения избирательно выключают Н-холинорецепторы, а атропин и скополамин — М-холинорецепторы.

    Классические медиаторы выполняют не только функцию передатчиков возбуждения, но обладают и общебиологическим действием. К ацетилхолину наиболее чувствительна сердечнососудистая система, он вызывает и усиленную моторику пищеварительного тракта, активируя одновременно деятельность пищеварительных желез, сокращает мускулатуру бронхов и понижает бронхиальную секрецию. Под влиянием норадреналина происходит повыше­ние систолического и диастолического давления без изменения сер­дечного ритма, усиливаются сердечные сокращения, снижается секреция желудка и кишки, расслабляется гладкая мускулатура кишки и т. д. Более разнообразным диапазоном действий характеризуется адреналин. Посредством одновременной стимуляции ино-, хроно- и дромотропной функций адреналин повышает сердечный выброс. Адреналин оказывает расширяющее и антиспазматическое действие на мускулатуру бронхов, тормозит моторику пищеварительного тракта, расслабляет стенки органов, но тормозит деятельность сфинктеров, секрецию желез пищеварительного тракта.

    В тканях всех видов животных обнаружен серотонин (5-окситриптамин). В мозге он содержится преимущественно в структурах, имеющих отношение к регуляции висцеральных функций, на периферии продуцируется энтерохромаффинными клетками кишки. Серотонин является одним из основных медиаторов метасимпатической части автономной нервной системы, участвующей преимущественно в нейроэффекторной передаче, и выполняет также медиаториую функцию в центральных образованиях. Известно три типа серотонинергических рецепторов — Д, М, Т. Рецепторы Д-типа локализованы в основном в гладких мышцах и блокируются диэтиламидом лизергиновой кислоты. Взаимодействие серотонина с этими рецепторами сопровождается мышечным сокращением. Рецепторы М-типа характерны для большинства автономных ганглиев; блокируются морфином. Связываясь с этими рецепторами, передатчик вызывает ганглиостимулирующий эффект. Рецепторы Т-типа, обнаруженные в сердечной и легочной рефлексогенных зонах, блокируются тиопендолом. Действуя на эти рецепторы, серотонин участвует в осуществлении коронарных и легочных хеморефлексов. Серотонин способен оказывать прямое действие на гладкую мускулатуру. В сосудистой системе оно проявляется в виде констрикторных или дилататорных реакций. При прямом действии сокращается мускулатура бронхов, при рефлекторном — изменяются дыхательный ритм и легочная вентиляция. Особенно чувствительна к серотонину пищеварительная система. На введение серотонина она реагирует начальной спастической реакцией, переходящей в ритмические сокращения с повышенным тонусом и завершающейся торможением активности.

    Для многих висцеральных органов характерной является пуринергическая передача, названная так вследствие того, что при стимуляции пресинаптических терминален выделяются аденозин и инозин — пуриновые продукты распада. Медиатором же в этом случае является А Т Ф. Местом его локализации служат пресинаптические терминалы эффекторных нейронов метасимпатической части авто­номной нервной системы.

    Выделившийся в синаптическую щель АТФ взаимодействует с пуринорецепторами постсинаптической мембраны двух типов. Пуринорецепторы первого типа более чувствительны к аденозину, второго — к АТФ. Действие медиатора направлено преимущественно на гладкую мускулатуру и проявляется в виде ее релаксации. В механизме кишечной пропульсии пуринергические нейроны являются главной антагонистической тормозной системой по отношению к возбуждающей холинергической системе. Пуринергические нейроны участвуют в осуществлении нисходящего торможения, в механизме рецептивной релаксин желудка, расслабления пищеводного и анального сфинктеров. Сокращения кишечника, возникающие вслед за пуринергически вызванным расслаблением, обеспечивают соответствующий механизм прохождения пищевого комка.

    В числе медиаторов может быть гистамин. Он широко распространен в различных органах и тканях, особенно в пищеварительном тракте, легких, коже. Среди структур автономной нервной системы наибольшее количество гистамина содержится в постганглионарных симпатических волокнах. На основании ответных реакций в некоторых тканях обнаружены и специфические гистаминовые (Н-рецепторы) рецепторы: Н1- и Н2-рецепторы. Классическим действием гистамина является повышение капиллярной проницаемости и сокращение гладкой мускулатуры. В свободном состоянии гистамин снижает кровяное давление, уменьшает частоту сердечных сокращений, стимулирует симпатические ганглии.

    На межнейронную передачу возбуждения в ганглиях автономной нервной системы тормозное влияние оказывает ГАМК. Как медиатор она может принимать участие в возникновении пресинаптического торможения.

    Большие концентрации различных пептидов, особенно субстанции Р, в тканях пищеварительного тракта, гипоталамуса, задних корешков спинного мозга, а также эффекты стимуляции последних и другие показатели послужили основанием считать суб­станцию Р медиатором чувствительных нервных клеток.

    Помимо классических медиаторов и «кандидатов» в медиаторы, в регуляции деятельности исполнительных органов участвует еще большое число биологически активных веществ — местных гормонов. Они регулируют тонус, оказывают корригирующее влияние на деятельность автономной нервной системы, им принадлежит существенная роль в координации нейрогуморальной передачи, в механизмах выделения и действия медиаторов.

    В комплексе активных факторов видное место занимают простагландины, которых много содержится в волокнах блуждающего нерва. Отсюда они выделяются спонтанно либо под влиянием стимуляции. Существует несколько классов простагландинов: Е, G, А, В. Их основное действие — возбуждение гладких мышц, угнетение желудочной секреции, релаксация мускулатуры бронхов. На сер­дечно-сосудистую систему они оказывают разнонаправленное дей­ствие: простагландины класса А и Е вызывают вазодилатацию и гипотензию, класса G — вазоконстрикцию и гипертензию.

    Синапсы ВНС имеют в целом такое же строение, что и центральные. Однако отмечается значительное разнообразие хеморецепторов постсинаптических мембран. Передача нервных импульсов с преганглионарных волокон на нейроны всех вегетативных ганглиев осуществляется Н-холинергическими синапсами, т.е. синапсами на постсинаптической мембране которых расположены никотинчувствительные холинорецепторы. Постганглионарные холинергические волокна образуют на клетках исполнительных органов (желез, ГМК органов пищеварения, сосудов и т.д.) М-холинергические синапсы. Их постсинаптическая мембрана содержит мускаринчувствительные рецепторы (блокатор-атропин). И в тех и других синапсах передача возбуждения осуществляется ацетилхолином. М-холинергические синапсы оказывают возбуждающее влияние на гладкие мышцы пищеварительного канала, мочевыводящей системы (кроме сфинктеров), железы ЖКТ. Однако они уменьшают возбудимость, проводимость и сократимость сердечной мышцы и вызывают расслабление некоторых сосудов головы и таза.

    Постганглионарные симпатические волокна образуют 2 типа адренергических синапсов на эффекторах – a-адренергические и b-адренергические. Постсинаптическая мембрана первых содержит a1-и a2 – адренорецепторы. При воздействии НА на a1-адренорецепторы происходит сужение артерий и артериол внутренних органов и кожи, сокращение мышц матки, сфинктеров ЖКТ, но одновременно расслабление других гладких мышц пищеварительного канала. Постсинаптические b-адренорецепторы также делятся на b1 – и b2 – типы. b1-адренорецепторы расположены в клетках сердечной мышцы. При действии на них НА повышается возбудимость, проводимость и сократимость кардиомиоцитов. Активация b2-адренорецепторов приводит к расширению сосудов легких, сердца и скелетных мышц, расслаблению гладких мышц бронхов, мочевого пузыря, торможению моторики органов пищеварения.

    Кроме того, обнаружены постганглионарные волокна, которые образуют на клетках внутренних органов гистаминергические, серотонинергические, пуринергические (АТФ) синапсы.

    studfiles.net

    Цветовой показатель

    Прежде чем приступить к взятию крови у больного, нужно знать, для какой цели ее берут и какое количество крови нужно для анализа.

    Место взятия крови. Если нужно взять несколько капель крови, ее берут из мочки уха или из мякоти третьей фаланги пальца руки. В клинических и больничных учреждениях чаще берут кровь из пальца. Когда нужно получить несколько миллилитров крови, ее берут из вены предплечья.

    Время взятия крови. Важен также момент взятия крови. Для определения количества лейкоцитов нужно брать кровь натощак, так как после еды может быть пищеварительный лейкоцитоз.

    Инструменты для взятия крови и их стерилизация. Из пальца можно получить кровь любым колющим инструментом: иглой от шприца, писчим пером, оспенным ланцетом, небольшим хирургическим скальпелем и т. д. Удобным инструментом для взятия крови из пальца считалась ранее специальная игла Франка (50).

    Брать кровь у больного следует таким образом, чтобы возможность внесения инфекции в рану была полностью исключена. Инструменты должны быть простерилизованы кипячением или обеззаражены спиртом. От кипячения скальпель и ланцеты тупятся, а у иглы Франка для взятия крови часто ржавеет пружина. Стерилизация спиртом ланцета иглы Франка недостаточна, в связи с чем не исключена возможность занесения инфекции в ранку пальца.

    Поэтому в настоящее время применяют иглу-скарификатор со сменными копьями (иглами), устроенными наподобие иглы Франка. К игле-скарификатору приложено 16 съемных копий (игл), которые кипятят и сменяют после каждого взятия крови.

    Часто предпочитают брать кровь из пальца простыми инструментами (оспопрививательными перышками, иглой от шприца и др.), которые стерилизуются кипячением.

    Стерилизация кожи больного и медсестры. Кожу на том месте, где должна быть взята кровь, протирают спиртом, а затем эфиром. Если кожа загрязнена, ее тщательно (щеткой) моют водой с мылом. Не нужно слишком растирать кожу, чтобы не вызвать гиперемии: последняя может дать местные изменения состава крови, в результате чего получится неправильный результат анализа.

    Медицинская сестра перед взятием крови у больного должна тщательно вымыть руки с мылом и протереть их спиртом. Место укола и инструменты должны быть сухими. В противном случае кровь, выходя на поверхность кожи, смешается с водой или со спиртом и изменит свой состав. Если кожа сухая, то кровь не расплываегся и выступает на поверхность в виде шарика.

    Первым  и вторым пальцами левой руки захватывают с боков третью фалангу пальца больного и приставляют к ее мякоти перпендикулярно к поверхности колющий инструмент, который держат в правой руке. Слегка нажимая, производят прокол поверхности слоя кожи, вполне достаточный для получения нескольких капель крови. Силу нажима нужно соразмерять с толщиной кожи больного. Укол должен быть настолько глубоким, чтобы кровь самостоятельно выступила на поверхность кожи. Первую выступившую каплю стирают кусочком стерильной марли, так как кровь в ней может быть изменена вследствие некоторого разрушения тканей в результате укола. Кровь для исследований берут из последующих капель. После взятия крови к месту укола прикладывают кусочек стерильной марли или ваты и предлагают больному прижать ее другим пальцем. В большинстве случаев этого бывает вполне достаточно, чтобы кровь быстро остановилась.

    Если кровотечение не прекращается, накладывают маленькую давящую повязку.

    Эритроциты в современных анализах крови обозначаются аббревиатурой RBC(red blood cells = красные провяные клетки). Лейкоциты —WBC(white blood cells = белые кровяные клетки).

    Нормы содержания эритроцитов в анализах крови тоже определены, но запоминать их не обязательно. Гораздо полезнее узнать про цветовой показатель(ЦП). Его более редкое название —цветной показатель. Цветовой показатель отражает степень насыщения эритроцитов гемоглобином. В норме цветовой показатель равенот 0.8 до 1.05.

    Расчет цветового показателя делается так: утроенное содержание гемоглобина(в г/л) делятна три первые цифры содержания эритроцитов(запятую не учитывают, как будто ее вообще нету).

    ЦП = 3 × Hb (г/л) / [три первые цифры содержания эритроцитов без учета запятой].

    Пример расчета цветового показателя, если гемоглобин 151 г/л, эритроциты 5,1 × 1012/л:

    ЦП= 3 × 151 / 510 = 0.8882 =0.89(округляют до 2 знаков после запятой).

    Особенности расчета ЦП:

    Если содержание эритроцитов в анализе крови округлено до одной значащей цифры после запятой, то для расчета ЦП последнюю цифру заменяют нулем (например, 5,1 → 510).

    Не имеет значения, в каком объеме указано количество эритроцитов (на литр, на мл или на кубический миллиметр), на результат подсчета это не повлияет.

    Итак, в норме цветовой показатель равен 0.8-1.05. По величине ЦП все анемии делятся на 3 группы:

    • гипохромные (от греч. хрома — цвет): при ЦП меньше 0,8.

    • нормохромные: при ЦП 0,8—1,05.

    • гиперхромные анемии: при ЦП выше 1,05.

    Принцип здесь простой:

    • если нарушается синтез гемоглобина(например, не хватает железа), то эритроцитов будет достаточно, но они будут «пустые»;

    • если нарушается деление кроветворных клеток(например, не хватает витаминов B9 и B12), то эритроцитов будет мало, зато они будут крупнее обычных и переполнены гемоглобином.

    1. Расчёт цветового показателя

    Вычисление проводят по определенным ранее показателям эритроцитов и гемоглобина. Вычисление проводят путем деления утроенного числа гемоглобина в граммах на 1л на первые 3 цифры числа эритроцитов.

    Цветовой показатель - это величина относительная и выражается в отвлеченных цифрах. В норме цветовой показатель колеблется от 0.86 до 1.2

    3.Определение количества гемоглобина по методу Сали

    1. Подготовить гемометр, заполнив

    градуированную пробирку 0.1 н. р-ром НС1 до

    метки 0.2 мл (первое кольцо).

    2.Набрать кровь 0.02 мл. и выдуть в пробирку с

    кислотой.

    3.Оставить гемометр на 5 мин., приливать по

    каплям дист. воду. Разведение проводят до

    полного совпадения цвета пробирки с цветом

    стандарта. Показания гемометра считают по

    нижнему мениску.

    Определение гемоглобина проводят колориметрическим методом, т.е. путём сравнения цвета исследуемого и стандартного растворов. Для выражения концентрации в единицах международной системы (СИ), нужно количество гемоглобина в г/% умножить на 10.

    4. Подсчет

    количества

    эритроцитов в крови

    человека

    1. Подготовить камеру.

    2. Набрать кровь в капилляр до метки 0,5, затем 3% NaClдо метки 101 (разв. в 200 раз). 3. Заполнить камеру, считать под малым увеличением микроскопа. 4.3ная объем камеры и разведение крови, высчитывают кол-во эритроцитов по формуле: (А*4000*200)/80 = в 1 мкл и 1л крови.

    Правильное заполнение счетной камеры разведённой кровью обеспечивает точность подсчета форменных элементов. Подсчёт эритроцитов проводят в 5 больших квадратах, разграфленных на 16 маленьких и расположенных по диагонали, учитывая правило Егорова. Для того чтобы определить содержание эритроцитов в 1 л крови, нужно число эритроцитов, выраженное в миллионах, умножить на 10

    5.Определение

    концентрации

    лейкоцитов

    1. Подготовить камеру Горяева.

    2.Набрать кровь в капилляр, развести 3% р-ром уксусной кислоты.

    3.Заполнить камеру разведённой кровью, считать под малым увеличением (об. 8, ок. 10 или 15).

    4.Зная объем камеры и разведение крови, высчитывают кол-во форменных элементом в 1 л крови

    Ах4000х20

    Х= = Ах50

    1600 (400)

    Подсчет проводят в 100 больших неразграфленных квадратах сетки Горячева, расположенных по четыре, учитывая, правило Егорова. Для определения кол-ва лейкоцитов в 1мкл крови необходимо число, полученное при подсчёте, умножить на 50. Для пересчёта на 1 л крови число лейкоцитов, выраженное в тысячах, умножить на 106.

    6.Определение

    СОЭ

    методом

    Панченкова

    1.Подготовить капилляр, промыть цитратом

    2.На часовое стекло нанести р-р цитрата, отмеренногокапилляром (половина метки «Р»).

    З.Набрать кровь до метки «К».

    4.Перемешать кровь с цитратом, набрать до отметки «О» и поставить на час в штатив.

    Величина СОЭ зависит от содержания глобулинов и особенно фибриногена. Взять точное соотношение крови и реактива. Определить СОЭ после часастояния по высоте верхнего прозрачного слоя. Определяйте СОЭ при температуре 18-20 градусов.

    7.Гематокрит — это соотношение между объемом форменных элементов крови, в основном эритроцитов, и объемом плазмы.

    Метод определения гематокрита основан на разделении плазмы и эритроцитов с помощью центрифугирования. Определение производят в гематокритной трубке, представляющей собой стеклянную пипетку, разделенную на 100 равных частей.

    Перед взятием крови гематокритную трубку промывают раствором гепарина или щавелевокислых солей. Затем набирают в трубку капиллярную кровь до отметки «100», закрывают резиновым колпачком и центрифугируют в течение 1—1,5 часа при 1,5 тысячи оборотов в минуту. После этого отмечают, какую часть в градуированной трубке составляют эритроциты, это и есть гематокрит.

    Гематокритную величину определяют с помощью отсчетной шкалы, прилагаемой к центрифуге. В норме объем массы эритроцитов меньше объема плазмы.

    Гематокрит у женщин составляет 36—42 %, у мужчин — 40—48 %.

    Увеличение гематокрита наблюдается при эритремии, повышении количества эритроцитов, и обезвоживании организма, уменьшение гематокрита наблюдают прианемиях.

    Величиной гематокрита пользуются для расчета массы эритроцитов, циркулирующих в крови, и некоторых других показателей крови, например средней процентной концентрации гемоглобина в одном эритроците и среднего объема одного эритроцита.

    Определение

    объёмного

    соотношения

    плазмы

    и

    форменных

    элементов крови

    Промыть капилляр центрифуги. Шкляра цитратом, набрать кровь в капилляр и центрифугировать в течении 1 мин.

    Вычисление объёмного соотношения проводится по шкале капилляра: по краям форменные элементы, в центре - плазма. Найденные величины выражают в %.

    8. Определение

    времени

    свертывания

    крови (метод

    Сухарева,

    Бюркера и

    Дьюка).

    Метод Сухарева: 1. Кровь в кол-ве 25-30 мл набирают в капилляр от аппарата Панченкова и переводят в середину капиллярной трубки. 2.Включают секундомер и через каждые 20 сек. наклоняют капилляр вправо, влево, под углом 30-40 градусов. 3. Определяют начало и конец свёртывания, с замедления движения и до полной остановки в капилляре.

    Метод Бюркера:Каплю крови берут напредметное стекло и углом другого предметного стекла приподнимают каплю крови. Определяют время свёртывания от начала появления нитей до конца образования сгустка.

    По Дьюку: Проколоть палец, ватным тампоном вытирают каплю крови через каждые 30 сек. До прекращения кровотечения. Определить время свёртывания.

    Время свёртывания даёт общие представления о внутреннем механизме мерной фазы процесса свёртывания, выражается в мин. В норме начало - от 30 сек. до 2 мин., конец свёртывания - от 3 мин. до 5мин.

    Удлинение времени свёртывания крови до 15мин. и более наблюдается при тяжёлой недостаточности факторов, участвующих во внутреннем пути образования протромбиназы, дефиците протромбина и фибриногена, а также при наличии в крови ингибиторов свёртывания, в частности гепарина.

    Метод Дьюка позволяет судить о сосудисто-тромбоцитарном гемостазе (первичном), т.к. протекает в сосудах микроциркуляторного русла(капиллярах).

    9. Определение группы крови по системе АВ0 при помощи цоликлонов анти-А и анти-В

    В две ячейки белой пластины вносят по капле исследуемой крови, затем в одну вносят цоликлон анти-А, в другую – анти-В (соотношение 1: 10), планшет покачивают и наблюдают за агглютинацией.

    Цоликлоны анти-А и анти-В содержат антитела к агглютиногенам А и В соответственно, значит, если агглютинация произошла с цоликлоном анти-А то это II(А) группа, если с анти-В, этоIII(В), если агглютинация не произошла – этоI(0) группа, если произошла в обоих случаях – этоIV(АВ) группа крови.

    10. Определение резус-фактора

    В ячейку белой пластины внести каплю крови и цоликлон

    анти-D.

    Если агглютинация произошла, то резус положительный, если нет – отрицательный.

    11.Осмотическая резистентность эритроцитов(ОРЭ)- проба на устойчивость эритроцитов к гипотоническим растворам хлорида натрия. При этом концентрацию хлорида натрия, при которой начинается осмотический Г., принимают за показательминимальной ОРЭ; концентрацию, при которой происходит полный Г., считают показателеммаксимальной ОРЭ. В норме минимальная ОРЭ 0,46-0,48 %NaCl, максимальная 0,32-0,34 %NaCl. ОРЭ – важный диагностический показатель, применяется для определения некоторых заболеваний (повышение ОРЭ – гипохромные анемии, понижение ОРЭ – врожденный сфероцитоз, одновременное расширение границ ОРЭ – острый гемолитический криз). Определяется с помощью растворомNaClс последовательно убывающей концентрацией.

    Определениеосмотической

    резистентностиэритроцитов.

    1. Приготовить в 8-ми пробирках 5 мл р-ра NaClразличной концентрации (0.9 - 0.2%).

    2. В каждую пробирку пипеткой ввести по 3 капли дефибринированной крови.

    3. Оставить на 1 час. 4. По цвету р-ра и его прозрачности определяют осмотическую стойкость.

    Осмотическая резистентность - это устойчивость эритроцитов по отношению к гипотоническим р-рам солей. При помещении эритроцитов в р-р с концентрацией ниже 0.85 - 0.9% они набухают, в большей -сморщиваются. На этих свойствах основано определение осмотической резистентности. Степень гемолиза определяется в гипотонических растворах.

    12.Подсчёт

    лейкоцитарной

    формулы

    1.Окрашенный мазок микроскопируют с иммерсионной системой. Используют окуляр 7 или 10 и об. 90 (конденсор поднят, диафрагма открыта).

    2.На мазок наносят каплю иммерсионного масла.

    3.Считают все встречающиеся лейкоциты, дифференцируя их по видам.

    Всего считают 200 клеток, подсчитывают каждый вид и делят на 2, чтобы получить процентное соотношение

    Лейкоциты располагаются о мазке неравномерно: более тяжёлые (эозинофилы, моноциты) встречаются чаше по краю мазка, а более лёгкие (лимфоциты) в середине, поэтому счёт ведут по всему мазку в тонкой его части по методу зигзага, где хорошо просматривается структура клеток.

    studfiles.net

    Расчет цветового показателя крови

    Цветовой показатель крови – это важная ее характеристика, которая используется во время проведения исследования кровяных телец, эритроцитов и других составляющих. Именно он указывает на качественный состав красной жидкости. Благодаря специальным тестам в лабораторных условиях имеется возможность определить цветовой показатель (ЦПК), рассчитать его норму и возможные отклонения. С помощью специальной формулы измеряют количество красных кровяных клеток и гемоглобина в сыворотке. Эта информация предназначена для дальнейшей диагностики различных заболеваний. Что такое цветной показатель крови и как он рассчитывается, рассмотрим ниже.

    Как правильно рассчитать ЦП?

    ЦПК определяют во время лабораторного исследования общего анализа крови пациента. Значение рассчитывается по следующей формуле:

    Цветной Показатель Крови = (3 × Hb / А) / 100%

    Где, Hb обозначает количество гемоглобина, А – количество эритроцитов в 1 мкл.

    Например, как рассчитать ЦП, если гемоглобин у исследуемого составляет 135 г/л, а эритроциты – 4,28 млн./мкл. Расчет цветового показателя крови будет производиться таким образом:

    ((3 х 135) / 4,28) / 100 = 0,95

    Норма цветового показателя крови у взрослого человека находится в пределах от 0,85 до 1,05 единиц. На примере видно, что значение ЦПК у исследуемого входит в допустимые пределы. Это означает, что такое заболевание, как анемия, у пациента отсутствует. Чтобы выявить другие заболевания, важно учитывать размер эритроцитов и количество гемоглобина в каждой клетке крови. Если цветовой показатель нормальный, но в то же время уровень эритроцитов и гемоглобина колеблется, то вычисления дают возможность предположить наличие у человека некоторой патологии.

    У новорожденных младенцев норма цветного показателя отличается от взрослых и характеризуется большим диапазоном. От самого рождения до 1-го месяца жизни цветовой показатель крови у детей в норме достигает 1,2. Это связано с тем, что у новорожденных в кровеносной системе все еще присутствуют клетки с фетальным гемоглобином. Уже с одного года и до 5-ти лет ЦП уменьшается до уровня 0,8. В крови у ребенка от 5-ти до 10 лет устанавливается значение, которое в норме соответствует взрослому человеку.

    Если определен цветовой показатель в пределах нормы, то такое состояние называют нормохромией.

    Превышение нормы гемоглобина

    Важным компонентом крови является гемоглобин. Его обозначение в вычислениях ЦП играет ключевую роль. Именно он придает ей красный цвет и осуществляет транспорт белка. Гемоглобин помогает насыщать кровь кислородом из легких. Когда костный мозг человека перестает вырабатывать достаточное количество красных кровяных телец, то развивается такое заболевание, как малокровие (анемия). Выявить эту патологию можно, только проведя клинический анализ крови, цветовой показатель которой будет значительно отличаться от допустимой нормы.

    Во всем мире ученые изучают причины, которые провоцируют различные патологии кровеносной системы. Медицинские исследования показывают, что от анемии страдает более четверти населения планеты. Мировая статистика показывает, что анемия в около 200000 случаев заканчивается летальным исходом. Наиболее часто возникает эта патология крови у женщин, особенно в период беременности. Также страдают от малокровия дети и люди в пожилом возрасте.

    Возникает анемия вследствие кислородного голодания клеток. Без кислорода нарушаются их основные функции, что ведет к их массовой гибели. Отсутствие кислорода негативно сказывается на всех органах и тканях в организме человека. Анализ в такой ситуации покажет низкий цветовой показатель крови.

    В некоторых случаях возникает аномалия, когда количество гемоглобина резко возрастает в кровяной сыворотке, несмотря на то, что число самих красных клеток небольшое. В таких случаях показатель в анализе крови превышает 1,1 единиц. Наступает гиперхромная анемия. Причинами подобного расстройства могут быть следующие нарушения:

    • Недостаток витамина В12;
    • Рак;
    • Развитие злокачественной опухоли;
    • Аутоиммунные заболевания.

    Гиперхромная анемия часто определяется такими симптомами, как:

    • Бледность кожных покровов, особенно губ и век;
    • Хроническая усталость;
    • Головокружение, мигрень;
    • Ломкость ногтей и волос;
    • Тахикардия, сердечная аритмия;
    • Боль в грудной клетке;
    • Холодные конечности.

    Если заболевание находится в самом начале своего развития, то может протекать практически бессимптомно. Единственным настораживающим признаком может стать временная утрата аппетита. Только расчет цветного показателя крови в данной ситуации может подтвердить начало расстройства, ведущего к анемии.

    Понижение уровня гемоглобина в крови

    Если индекс цветового показателя крови во время общего анализа выявлен меньший, чем 0,8 единиц, то это говорит о том, что уровень красных клеток снижен. Возникает дефицит такого микроэлемента в крови, как железо. Именно оно принимает активное участие в образовании новых красных кровяных телец. Резко снижается уровень гемоглобина, а также обнаруживаются патологически измененные и дефективные клетки. В таком случае диагностируется микроцитарная анемия, что подтверждает расчет ЦП.

    Среди наиболее распространенных причин заболевания крови, связанных с дефицитом железа, врачи называют следующие:

    • Недостаток в организме железа;
    • Период беременности;
    • Слишком болезненные и обильные менструации;
    • Внутренние кровотечения.

    Цветовой показатель крови понижен у ребенка, который страдает от почечной недостаточности. Именно это заболевание часто является причиной развития анемии у детей. В такой ситуации проводят дополнительный анализ мочи ребенка и ультразвуковое исследование почек.

    Если степень анемии легкая и заболевание находится на ранней стадии развития, то чаще всего она может сопровождаться просто повышенной усталостью и слабой головной болью. Но когда патология переходит в более тяжелую стадию, то пациент испытывает следующие опасные симптомы:

    • Дыхание становится затрудненным и учащенным;
    • Сильно бьется сердце;
    • Лицо и кожа рук заметно бледнеют;
    • У ребенка могут возникать частые рецидивы конъюнктивита.

    Лечится анемия, спровоцированная недостатком железа в крови, восполнением дефицита этого микроэлемента. Лекарственные препараты с железом легко усваиваются в организме, поэтому их назначают при первых признаках анемии. После того, как курс лечения окончен, важно снова рассчитать цветовой показатель крови. Это даст возможность увидеть, насколько эффективно прошла лечебная терапия.

    Легкая форма заболевания подразумевает коррекцию образа жизни пациента и следование специальной диете, насыщенной витаминами и микроэлементами. Все это помогает восстановить необходимый уровень гемоглобина и эритроцитов в крови. Восстановленный внутренний баланс возвращает здоровье и наполняет энергией. Корректировки постепенно повысят цветовой показатель, расчет в анализе крови это подтвердит.

    Если заболевание принимает слишком тяжелую форму, то пациенту поможет только процедура переливания крови, проводимая в специальных условиях стационара.

    Изучение клинического проявления анемии показывает, что чаще всего железо в крови теряют именно женщины. Мужчины страдают от сниженного содержания гемоглобина намного реже.

    Для того, чтобы избежать риска возникновения любого вида анемии, важно вести здоровый образ жизни. Физические нагрузки, которые дозированы и регулярны, а также сбалансированный рацион питания будут держать под контролем функцию кроветворения в организме. В любом случае важно проводить медицинское обследование как минимум 2 раза в год, сдавать кровь на анализ даже при появлении незначительных признаков недомогания. Расчет цветового показателя крови поможет вовремя определить появление недуга и предпринять необходимые меры по устранению заболевания.

    (Пока оценок нет) Загрузка...

    sosudinfo.com

    4. Расчёт цветового показателя.

    Цветовым показателем (ЦП) называют условную величину, характеризующую степень насыщения гемоглобином каждого эритроцита. Этот показатель можно вычислить, зная содержание гемоглобина в исследуемой крови и количество эритроцитов в 1 мкл этой же крови.

    ЦП = Нв (г/л) * 3 / (три первых цифры от числа эритроцитов)

    В норме цветовой показатель равен 0,85 - 1,15 - нормохромазия.

    Превышение ЦП верхнего предела нормы называют гиперхромазией, уменьшение за предел нижнего уровня нормы - гипохромазией.

    ХОД РАБОТЫ: определив в исследуемой крови содержание гемоглобина и эритроцитов в 1 л крови, рассчитайте цветовой показатель, сопоставьте с показателями нормы.

    5. Подсчёт лейкоцитарной формулы.

    Лейкоцитарной формулой называют процентное соотношение отдельных форм лейкоцитов, которые считают в окрашенных мазках крови в пересчете на 100 лейкоцитов и выражают в виде процентного содержания. Для более точного ее вычисления необходимо просмот­реть 200 лейкоцитов, а полученный результат поделить на 2.

    Лейкоцитарная формула (лейкограмма в норме).

    ГРАНУЛОЦИТЫ

    АГРАНУЛОЦИТЫ

    Нейтрофилы

    Базофилы

    Эозино-филы

    Лимфо-циты

    Моно-циты

    Юные

    Палочко-

    ядерные

    Сегменто-ядерные

    0-1 %

    1-4 %

    45-65 %

    0-1 %

    1-4 %

    25-40 %

    2-8 %

    В крови могут встречаться зрелые и юные формы лейкоцитов. В норме их легче всего обнаружить у самой многочисленной группы, т.е. у нейтрофилов. Юные нейтрофилы (миелоциты) имеют довольно крупное бобовидное ядро. Палочкоядерные – ядро, не разделенное на отдельные сегменты. Зрелые, или сегментоядерные, имеют ядро, разделенное на 2-3 сегмента. Чем больше сегментов, тем старше нейтрофил. Увеличение количества юных и палочкоядерных нейтрофилов свидетельствует об омоложении крови – это сдвиг лейкоцитарной формулы влево (лейкоз, белокровие, инфекции, воспаления). Снижение количества этих клеток свидетельствует о старении крови – это сдвиг лейкоцитарной формулы вправо.

    ХОД РАБОТЫ: включить микроскоп БИОМЕД-6 с видеокамерой ТСА-9, подключить его к компьютеру (по описанию в предыдущем параграфе), установить препарат с мазком крови.

    При просмотре мазка для подсчета лейкоцитарной формулы и морфоло­гической оценки клеток используют иммерсионную систему. Так как различ­ные виды лейкоцитов распределяются на мазке неравномерно подсчет клеток необходимо производить всегда по одной системе.

    Мазок передвигают от верхнего края к нижнему, затем отодвигают на 2–3 поля зрения, вдоль края и идут в обратном направлении до верхнего края и т. д.

    Идентифицируют и подсчитывают не менее 100 лейкоцитов. Подсчитывают только целые неразрушенные клетки. Если при этом обнаруживаются какие-либо отклонения от нормы (появление дегенеративных форм клеток, не выявляемых у здорового человека, изменение нормального соотношения различных типов лейкоцитов), обязательно просматривают еще 100 лейкоцитов по описанной методике. Полученные результаты регистрируют с помощью клавишного счетчика или другим способом.

    Используют нониусы горизонтального перемещения «лево-право» и «вперед-назад». Рекомендуемая точка начальной установки «вперед-назад» должна быть на цифре 10, а «лево-право» на цифре 40 (начальную установку измерения можно произвольно изменять). Последовательно передвигая нониусы на 1 мм (одно поле зрения), вначале «вперед-назад», а потом «лево-право» и подсчитывают количество и виды лейкоцитов, попавших в поле зрения.

    Полученные данные внести в таблицу.

    Лейкоцитарная формула (лейкограмма).

    ГРАНУЛОЦИТЫ

    АГРАНУЛОЦИТЫ

    Σ

    Нейтрофилы

    Базо-филы

    Эозино-филы

    Лимфо-циты

    Моно-циты

    Юные

    Палочко-

    ядерные

    Сегменто-ядерные

    ..

    ..

    ..

    ..

    ..

    ..

    ..

    100

    Сделать вывод по соответствию лейкоцитарной формулы норме, наличию сдвигов вправо или влево.

    studfiles.net

    Работа 4: определение цветового показателя.

    ЦЕЛЬ: Освоить методику определения цветового показателя крови, научится по его величине оценивать дыхательную функцию крови, в частности эритроцитов крови

    МЕТОДИКА. Цветовой показатель отражает относительное содержание гемоглобина в эритроците. Вычисляют цветовой показатель определением отношения двух частных, полученных от деления количества гемоглобина на количество эритроцитов в норме и количества гемоглобина на количество эритроцитов в исследуемой крови по формуле :

    где:

    Х гем. - найденное количество гемоглобина

    N гем. - нормальное количество гемоглобина

    Х эр. - найденное количество эритроцитов

    N эр. - нормальное количество эритроцитов

    Если принять, что в норме 1000 мл крови содержится 167 г/л гемоглобина и 5000000 эритроцитов в 1 мкл крови, то рассчитывают по формуле:

    ;

    Где ЦП - цветной показатель

    При сокращении:

    Например : Х гем. - 145 г/л; Х эр. - 4500000 в 1 мкл

    Рекомендации к оформлению протокола. Провести расчет цветового показателя исследуемой крови по результатам, полученным Вами при определении количества гемоглобина исследуемой крови по методу Сали и проведенному подсчету количества эритроцитов в ней по описанной выше методике. Сравнить результат с нормой и сделать вывод. При отклонении от нормы указать возможные причины увеличения или уменьшения цветного показателя.

    Для контроля усвоения материла решите следующие задачи:

    1. Как изменится осмотическая стойкость эритроцитов, если количество

    ретикулоцитов в крови увеличится в 2 раза?

    1. При анализе крови оказалось, что количество эритроцитов равно 3 млн в 1мм3, средний диаметр их 8,2 мкм, у некоторых клеток до 12 мкм. Шесть месяцев тому назад больной перенес резекцию желудка. С чем могут быть связаны обнаруженные изменения в крови и как они называются?

    2. Количество эритроцитов у человека в течении ряда лет колебалось около 4,8 млн в 1мм3. После переселения на новое место число эритроцитов в крови увеличилось до 6,5 млн в 1мм3. В какую местность переехал человек?

    3. Перед Вами два анализа крови одного и того же человека. Какая между ними разница?

    А : Эритроцитов - 5 млн в 1 мм3. Б : Эритроцитов - 5 млн в 1мм3.

    Нв - 4,5 г% Нв - 14,8 г%

    Количество крови - 5 л. Количество крови - 5 л.

    Гематокрит – 0,45 Гематокрит – 0,48

    1. Чем отличается реакция эритрона на гипоксию у нефрэктомированных животных (удалены почки) от реакции нормальных животных?

    2. В кровь кролика А перелили плазму крови кролика В, находившегося в условиях с низким содержанием кислорода в воздухе. Количество эритроцитов в крови кролика В начало возрастать. Почему?

    3. У кролика ежедневно для исследования брали 15 мл крови. Через 10 дней количество Нв и эритроцитов у него стало больше, чем в начале опыта. Почему ?

    4. Масса студента 70 кг. Анализ крови: количество - 4,9 л, гематокрит 0,50,

    количество эритроцитов 3,9 млн в 1 мм3., количество Нв 130 г/л, Ц.П. - 1,0. Оценить эти показатели. Какими они будут после 15 минутного бега (средняя физическая нагрузка)? Объясните механизм изменений.

    1. После соревнований (бег на 5 км) у спортсмена был следующий анализ крови : эритроцитов 6 млн в 1 мм3, лейкоцитов 10109 / л, из них с/я нейтрофилов 60 %, лимфоцитов - 40 %. Оцените данную реакцию организма на физическую нагрузку.

    10.У человека с резким снижением секреции соляной кислоты железами слизистой оболочки желудка (анацидный гастрит) обнаружена анемия. Обоснована ли рекомендация врача об увеличении в рационе продуктов, содержащих железо, для лечения анемии ?

    11.В интактный организм ввели сыворотку животного, предварительно анемизированного кровопусканием. Как изменится эритропоэз у реципиента ? Почему ?

    12.В 1 мм3 крови содержится 6 млн эритроцитов. Сколько всего их в

    циркулирующей крови, если 20 % всей крови находится в кровяных де по? Вес тела 80 кг.

    13.При подсчете в 5 больших квадратах сетки Горяева оказалось 580 эритроцитов. Сколько их содержится в 1мм3 крови, если кровь в меланжер набиралась до отметки 0,5?

    1. Количество эритроцитов в 1 мм3 исследуемой крови равно 5,5 млн, а концентрация Нв14 г%. Определите Ц.П. Укажите, отличается ли он от нормы?

    2. Ц.П. равен 0,9. Концентрация Нв 10,5 г%. Сколько эритроцитов содержится в 1 мм3 данной крови? Соответствует ли это норме?

    3. После оперативного вмешательства и удаления большей части желудка через некоторое время уменьшается количество эритроцитов и Нв. Чем это может быть вызвано?

    4. На лабораторном столе находятся неподписанные колбы с растворами хлористого натрия. Известно, что в одну из них налит 0,9 % раствор, в другую 0,2 % раствор. Как установить концентрацию раствора в каждой колбе, воспользовавшись каплей крови человека?

    5. При анализе крови у жителей высокогорного района было обнаружено повышение количества эритроцитов и Нв как у тех, кто постоянно живет в горах, так и у только прибывших в этот район. Одинаков ли механизм эритроцитоза в том и другом случае? Какой дополнительный анализ крови надо провести чтобы обосновать вывод?

    6. После сужения почечной артерии у человека обнаружены изменения количества эритроцитов в крови. Чем они могут быть обусловлены?

    7. Врач имеет анализ крови : эритроцитов 4,3 млн в 1 мм3, Нв - 140 г/л, лейкоцитов 10109 /л, эозинофилов 2 %, базофилов 1 %, п/я 8%, с/я 60 %, лимфоцитов 27 %, моноцитов 7%, СОЭ - 9 мм/час. Дайте оценку анализа крови.

    8. Количество Нв у испытуемого 140 г/л, эритроцитов 3,5 млн в 1мм3. Рассчитайте Ц.П. крови. Сделайте вывод.

    9. При помещении в раствор поваренной соли эритроциты приобрели шарообразный вид. Каковы причины изменения формы эритроцитов Какова приблизительно концентрация соли в этом растворе? Как называется этот процесс?

    10. Перед вами два анализа крови : а) эритроцитов - 4,5 млн в 1мм3, Нв - 149 г/л; б) эритроцитов 2,7 в 1 мм3, Нв - 74 г/л. Вычислите Ц.П. у обоих больных и сделайте заключение.

    11. Оцените следующий анализ крови : лейкоцитов 7109 /л, лейкоцитарная формула: нейтрофилов 55 %, из них п/я - 4 %, с/я - 55 %, эозинофилов 18 %, лимфоцитов 22 %, моноцитов 5 %.

    12. У спортсмена альпиниста перед тренировочными сборами в горах определили в крови 4,5 ∙1012 /л. Изменится ли у него количество эритроцитов на высоте 3000 м над уровнем моря? Почему?

    13. При морфологическом исследовании крови определили, что некоторые эритроциты содержат ядра. Какие факторы могут привести к появлению в циркулирующей крови ядерных эритроцитов?

    14. Содержание эритроцитов в периферической крови составило 7 млн в 1мм3, Ц.П. - 0,9. Показатель гематокрита: 0,40, кровь из пальца была взята у женщины, кормящей грудью ребенка. Какие рекомендации дадите этой женщине?

    15. В 25 больших квадратах камеры Горяева оказалось 100 лейкоцитов. Сколько их содержится в 1 мм3 крови, если она набиралась в меланжер до отметки 0,5?

    16. После непродолжительной мышечной работы у здорового человека появился эритроцитоз. Как Вы объясните, почему это произошло?

    studfiles.net

    24. Определение цветового показателя(цп) крови

    Цветовым показателем (ЦП) называют условную величину, характеризующую степень насыщения гемоглобином каждого эритроцита.

    Этот показатель можно вычислить, зная содержание гемоглобина в исследуемой крови и количество эритроцитов в 1 мкл этой же крови.

    ЦП = Нв (г/л) * 3 / (три первых цифры от числа эритроцитов)

    В норме цветовой показатель равен 0,85 - 1,15 - нормохромазия.

    Превышение ЦП верхнего предела нормы называют гиперхромазией, уменьшение за предел нижнего уровня нормы - гипохромазией.

    Гиперхромазия связана с увеличением содержания гемоглобина в эритроцитах, что зависит от большего их объема (макроцитоз, мегалоцитоз), а не от перенасыщения гемоглобином. Гипохромазия зависит от малого содержания гемоглобина в одном эритроците; причиной может быть малый объем эритроцита или недостаток железа, необходимого для синтеза гемоглобина.

    26. Расчет должного основного обмена

    1. Расчет должного основного обмена по таблицам Гаррис-Бенедикта.

    Цель работы: освоить методику расчета должного основного обмена по таблицам.

    Ход работы: с помощью ростомера измеряют рост испытуемого и взвешивают его на весах. В соответствии с полом испытуемого берут таблицу для мужчин или для женщин (у мужчин основной обмен на 7-10 % выше, чем у женщин). Таблица состоит из двух частей – А и Б. Из части таблицы А выписывают первое число, стоящее против веса испытуемого. К нему прибавляют второе число, найденное из части таблицы Б по возрасту испытуемого и его росту. Сумма двух этих чисел представляет собой должную (нормальную) величину основного обмена. В норме отклонение реального основного обмена от должного не должно превышать 10% (как в сторону повышения, так и в сторону понижения).

    2. Определение отклонения от должного основного обмена по формуле Рида.

    Рид на основании многочисленных параллельно исследуемых параметров гемодинамики и значений основного обмена (ОО) выявил зависимость между показателями этих функций:

    Процент отклонения ОО = 0,75 х (Частота пульса + Пульсовое давление х 0,74) – 72.

    У испытуемого в положении лёжа на спине в условиях максимального мышечного покоя и минимального эмоционального напряжения произведите трёхкратное измерение систолического и диастолического артериального давления и частоты пульса. Интервал между измерениями должен быть 1-2 минуты. Для расчётов по формуле Рида берутся минимальные значения измеренных параметров.

    27. Динамометрия. Определение остроты мышечного чувства. Гнатодинамометрия

    Динамометрия, метод измерения силы. В мед. и биол. науках измеряют обычно мышечную силу кисти, рук, ног и туловища. Так как сила сокращения отдельных мышечных групп до известных пределов может считаться пропорциональной степени развития всей мышечной системы тела в целом, то показания динамометра характеризуют степень физ. развития. Д. применяется в антропологии, антропометрии, в невропатологии, при проф. отборе, изучении воинских контингентов, при изучении утомления. Последнее применение Д. основано на том, что мышечная сила изменяется в зависимости от трудности и продолжительности проф. работы. Если метод позволяет получать результаты в графическом виде, то он называется динамографией. Динамометр—прибор для измерения мышечной силы—-имеется в большом числе моделей

    Гнатодинамометрия — метод определения силы жевательных мышц и выносливости опорных тканей зубов к восприятию давления при сжатии челюстей с помощью специального аппарата — гнатодинамометра. При сжатии гнатодинамометра зубами появляется ощущение боли, этот момент и фиксируют как показатель  гнатодинамометрии. Показатели гнатодинамометрии в зависимости от пола, возраста и индивидуальных особенностей колеблются от 15 до 35 кг в области передних и 45—75 кг в области коренных зубов. Индивидуальная выносливость пародонта к давлению меняется при различных заболеваниях (пародонтоз, периодонтит, авитаминоз), а также при частичной потере зубов. Данные гнатодинамометрии имеют значение припротезировании зубов и ортодонтии.

    studfiles.net


    Смотрите также